豌豆肽通過Keap1/Nrf2/TXNIP信號通路減輕鉛誘導的PC12細胞氧化應激損傷( 二 )


實驗方法及結果
1、建立細胞模型:首先 , 將處于對數生長階段的PC12細胞在6孔板中預孵育24h 。 然后 , 用含有或不含有肽的新鮮培養基替換培養基4h 。 最后 , 用含有鉛或不含有鉛的新鮮培養液替換培養基24h , 用于隨后的測定 。
2、CCK檢測細胞活力:使用不同濃度的Pb(0~160μM)處理PC12細胞24h , 用CCK-8檢測細胞活力 , 結果如圖4A所示;使用不同濃度 , 不同種類的豌豆肽(0~200μMPP3/4/6)處理PC12細胞4h , 用CCK-8檢測細胞活力 , 結果如圖4B/C/D所示;使用200μM的豌豆肽(PP1~PP6)預處理PC12細胞4h , 再用10μM的Pb處理24h , 用CCK-8檢測細胞活力 , 結果如圖4E所示 。
豌豆肽通過Keap1/Nrf2/TXNIP信號通路減輕鉛誘導的PC12細胞氧化應激損傷
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圖4不同處理對PC12細胞活力的影響 。 (A)Pb對PC12細胞活力的影響;PP3(B)、PP4(C)和PP6(D)對PC12細胞活力的影響;(E)PP1~6對Pb暴露PC12細胞活力的影響 。 柱狀圖的值表示平均值±SD(n≥3) 。 不同上標字母表示差異(P<0.05) 。
3、活性氧ROS水平的檢測:根據文獻選擇80μMVC作為對照組評估豌豆肽抗氧化性能的標準(Anetal.,2014) 。 使用200μM的PP3/4/6和80μM的VC處理PC12細胞4h , 用試劑盒檢測ROS水平 , 結果如圖5A所示;使用200μM的PP3/4/6和80μM的VC預處理PC12細胞4h , 再用10μM的Pb處理24h , 用試劑盒檢測ROS水平 , 結果如圖5B所示 。
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圖5不同處理對PC12細胞內ROS的影響 。 (A)PP3、PP4、PP6和VC對PC12細胞內ROS的影響;(B)PP3、PP4、PP6和VC對Pb暴露PC12細胞內ROS的影響 。 柱狀圖的值表示平均值±SD(n≥3) 。 不同上標字母表示差異(P<0.05) 。
4、細胞氧化應激指標的檢測:使用200μM的PP3/4/6和80μM的VC處理PC12細胞4h , 用試劑盒檢測抗氧化酶SOD、CAT、GR、GPx活性和丙二醛MDA含量 , 結果如圖6A~E所示 , 檢測GSH和GSSG水平 , 結果如7A所示;使用200μM的PP3/4/6和80μM的VC預處理PC12細胞4h , 再用10μM的Pb處理24h , 檢測抗氧化酶SOD、CAT、GR、GPx活性和丙二醛MDA含量 , 結果如圖6F~J所示 , 檢測GSH和GSSG水平 , 結果如圖7B所示 。
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圖6不同處理對PC12細胞氧化應激指標的影響 。 SOD結果如圖(A、F)所示;CAT結果如圖(B、G)所示;GR結果如圖(C、H)所示;GPx的結果如圖(D、I)所示;MDA的結果如圖(E、J)所示 。 柱狀圖的值表示平均值±SD(n≥3) 。 不同上標字母表示差異(P<0.05) 。
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圖7不同處理對PC12細胞GSH/GSSG的影響 。 (A)PP3、PP4、PP6和VC對PC12細胞GSH/GSSG的影響;(B)PP3、PP4、PP6和VC對Pb暴露PC12細胞GSH/GSSG的影響 。 柱狀圖的值表示平均值±SD(n≥3) 。 不同上標字母表示差異(P<0.05) 。
5.WesternBlot:使用200μM的PP3/4/6和80μM的VC預處理PC12細胞4h , 再用10μM的Pb處理24h , 檢測Keap1/Nrf2/TXNIP通路蛋白的表達 。 結果如圖8所示 。
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圖8PP3、PP4、PP6和VC對Pb暴露的PC12細胞中Keap1、Nrf2和TXNIP蛋白表達的影響 。 (A)不同處理下PC12細胞中Keap1、Nrf2和TXNIP的蛋白質印跡結果;(B)不同處理下PC12細胞中Keap1、Nrf2和TXNIP蛋白相對表達量的變化 。
結論
鉛暴露可顯著降低PC12細胞的活力 , 增加ROS和MDA水平 , 降低SOD、CAT、GPx、GR和GSH/GSSG的活性 , 上調PC12細胞中Keap1和TXNIP蛋白的表達 , 下調Nrf2蛋白的表達 。 豌豆肽可以減輕鉛誘導的PC12細胞氧化應激損傷 , 通過Keap1/Nrf2/TXNIP信號通路保護PC12細胞 。 該研究將為鉛神經毒性的深入研究提供新的視角 。