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表1.PHM和PHMX在貯藏過程中的多肽沉淀率
表1.均質后 , 將多肽濃度為10mg/mL的苯丙氨酸和苯丙氨酸在室溫下保存 。 多肽在儲存過程中的沉淀率 。

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圖1.不同存放時間的離心沉淀率 。 分別對PHM、PHMX及其均質樣品進行了檢測

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表2.儲存未經處理和均質的PHM和PHMX多肽溶液 , 以評估超過60天的濁度保留
3.2HPH對多肽結構變化的影響
內部熒光對多肽周圍微環境的變化很敏感 , 因此熒光強度的變化被認為有助于表示多肽的結構變化 。 色氨酸、酪氨酸和苯丙氨酸等氨基酸殘基能吸收紫外光 , 這對多肽在270~300nm的吸收有貢獻 。 特別是 , 發色團Trp在分子中的位置與最大發射波長λem有關 。 圖2顯示了PHM和PHMX在290nm激發下的熒光光譜 。 當激發波長為290nm時 , PHM和PHMX在295nm處有很強的熒光發射峰 。 在400bar的壓力下 , 苯丙氨酸和苯丙氨酸引起相對熒光強度的降低 , 這與先前的研究結果一致 , 該結果表明 , 在壓力低于1000bar的高壓下處理后 , 相對熒光強度將顯著低于天然多肽 。 分子重排、能量轉移、基態絡合物的形成、碰撞猝滅和其他分子相互作用可能導致熒光猝滅 。

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圖2.PHM和PHMX的熒光發射光譜(T=298K , λex=290nm)
在HPH條件下 , 樣品中的多肽含量為10mg/mL 。 不同儲存時間對HPH法制備的HMP和HMPX穩定性的影響(A)-(E)分別代表儲存0、7、14、30和60天 。
對于酶解物體系 , 加入黃原膠或均質后體系的熒光強度發生了顯著變化(圖2A) , 表明多肽結構發生了改變 。 經400條均化處理后的樣品的熒光強度明顯低于未均質樣品 。 在較低加工壓力下的剪切、沖擊和振動會導致分子鏈纏繞和聚集 , 這反過來又會導致熒光強度降低 , 因為分子層上最初暴露的發色團的一部分會被困在分子內部 。 隨著儲存天數的增加到60天(圖2A-E) , PHMX的熒光強度與PHM相比繼續增加 。 由于未經均質的黃原膠的加入 , 黃原膠聚集的多肽分子鏈展開 , 生色團向外翻轉 , 導致更多的生色團暴露在分子水平上 。 均質采用動態高壓微流化預處理 。 由于強剪切和高頻振動的作用 , 黃原膠和多肽結合得更好 , 發色團的曝光處于穩定狀態 。 這些結果表明 , 均質有利于黃原膠與多肽的結合 , 較好地保持了體系的穩定性 。
3.3HPH對PHM顆粒大小的影響
用動態激光光散射法(適用于2nm~3000nm范圍內的顆粒)測量其粒度分布 , 并將結果表示為平均值 。 均質液中液滴的破碎受分散相的影響;在均化過程中 , 分散相也影響顆粒大小 。 因此 , 以黃原膠為增稠劑 , 考察了400BARHPH和黃原膠對多肽PHM的增稠劑粒徑的影響 。 如圖4所示 , 在儲存期開始時 , 顆粒大小一般為單峰 , 盡管PHM的大顆粒比例相對較高 , 這表明PHM的分散體系較差 。 加入黃原膠后 , HPH樣品的分散穩定性比PHM好 。 黃原膠具有抗氧化能力 , 可提高氧化穩定性 , 而氧化可通過誘導多肽聚集而降低多肽的穩定性 。 由于黃原膠可以覆蓋更大的界面面積 , 從而防止多肽的重新團聚 , 因此PHMX的特性 , 如顆粒大小和濁度 , 在均質后有望更加均勻 。
比較了在25℃下儲存長達7天的PHM與PHMX(圖4B)的尺寸變化 。 PHM和PHMX在HPH條件下均表現出逐漸減小的尺寸 。 相反 , 沒有HPH的PHMX保持不變 , 這表明較大粒子的聚集導致了體系的不穩定 。 與PHMX樣品相比 , PHM和經HPH處理的PHMX樣品的儲存分散穩定性更穩定 。 含有黃原膠的PHMX的顆粒尺寸達到較高水平 , 且沒有顯著降低(圖4C) , 而含有HPH的PHMX呈雙峰型 , 隨儲存期的延長而變窄(圖4D和E) 。 一般情況下 , 不含HPH的混合體系在儲瓶底部出現沉淀現象 , 尤其是含有黃原膠的樣品 。 將壓力增加到1750Mpa(1750bar)可以減小羽扇豆基飲料的顆粒尺寸 , 但不會隨著壓力的增加而改變甚至開始增大顆粒尺寸 。 作者推測 , 高于200Mpa(2000bar)的高壓氧處理可以誘導多肽的變性 , 這些多肽可以與其他脂肪球相互作用形成更大的聚集體 。
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