不同于“殺敵一千 , 自損八百”的化療 , 癌基因靶向治療因精準作用于致癌靶點而被稱為“生物導彈” 。
近年來 , 多種靶向治療藥物已成功應用于臨床 , 然而 , 晚期腫瘤患者實際獲益并不理想 , 其中一個重要原因就是:耐藥 。 而我們對靶向治療獲得性耐藥的發生機制知之甚少 。
有研究發現 , 在靶向治療中存活下來的殘留癌細胞 , 及隨后發生的DNA損傷修復是腫瘤細胞產生耐藥性的重要原因[1] 。 因此 , 探尋靶向治療誘導的DNA損傷修復相關分子 , 明確腫瘤耐藥性的發生機制 , 對于靶向藥物的研發和臨床方案的選擇有著至關重要的作用 。
【《科學·轉化醫學》:清除靶向治療殘余耐藥癌細胞的方法找到了】近日 , 美國杜克大學KrisC.Wood博士及其團隊研究發現 , 靶向治療后存活下來的腫瘤細胞中 , 存在DNA雙鏈斷裂(DSB)和DNA雙鏈斷裂修復 , 這一修復過程依賴于共濟失調毛細血管擴張突變(ATM)酶 。
他們還發現 , 靶向治療藥物與ATM抑制劑聯合使用 , 可根除體外細胞株和動物模型中存活的殘余腫瘤細胞 , 進而產生更持久的治療反應[2] 。
這一研究成果為臨床研發ATM抑制劑與現有靶向治療方案的整合奠定了理論基礎 , 相關研究成果近期發表在著名期刊《科學·轉化醫學》(ScienceTranslationalMedicine)上 。

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論文首頁
接下來 , 我們看看這項研究是如何開展的 。
首先 , 為了研究靶向治療是否會激活DNA損傷應答信號通路(DDR) , 研究團隊使用了一組對同源靶向治療敏感的腫瘤細胞株:表皮生長因子受體(EGFR)突變型非小細胞肺癌(NSCLC)細胞株(PC9、HCC827) , 間變性淋巴瘤激酶(ALK)基因重排型NSCLC細胞株(H3122) , BRAF基因突變型黑色素瘤細胞株(A375) , FLT3基因突變型急性髓系白血病(AML)細胞株(MOLM13) , KRAS基因突變型胰腺癌細胞株(MIAPaCa-2)和NSCLC細胞株(A549) 。
在用不同劑量的同源靶向治療藥物處理上述細胞株24小時后 , 他們發現S1981位點被磷酸化的ATM(p-ATM)和γH2AX表達明顯增加 。 需要指出的是 , ATMS1981位點磷酸化是激活下游DNA損傷應答信號通路所必需的位點 , H2AX(組蛋白H2A家族成員X)磷酸化產生的γH2AX是DNA雙鏈斷裂的生物標志物 。
接下來的細胞克隆形成實驗表明 , 在不影響細胞活力的藥物劑量下 , 仍然觀察到γH2AX表達明顯增加 , 這一結論在三種吉非替尼(Gefitinib)耐藥EGFR突變型NSCLC細胞株(PC9R、GR4、WZR12)中得到了進一步驗證;同時 , 在接受靶向藥物處理的PC9和A549細胞中觀察到膜聯蛋白V染色(用于檢測細胞凋亡)為陰性 。
最后 , 中性彗星試驗(在單細胞水平檢測DNA損傷的技術)發現 , PC9和A549細胞靶向藥物處理24小時后檢測到DNA雙鏈斷裂的存在 , 表明觀察到的ATM激活是由于DNA損傷所致 。
以上結果表明 , 在靶向治療中存活的腫瘤細胞會出現DNA雙鏈斷裂和隨后的ATM激活 。

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靶向藥物處理的腫瘤細胞中DNA損傷應答信號通路被激活
那么 , ATM又是如何被激活的呢?我們接著往下看 。
首先 , PC9和HCC827細胞用吉非替尼(EGFR阻斷劑)處理24小時后 , 觀察到ATM及其底物檢查點激酶2(Chk2)T68位點磷酸化表達增加;隨后 , 研究人員分別用ATM激酶抑制劑(AZD0156)單獨或與吉非替尼聯合使用處理PC9細胞 , 發現AZD0156和吉非替尼聯合使用可消除γH2AX的表達和DNA雙鏈斷裂修復途徑的激活 。
在接下來的實驗中 , 研究人員發現 , 隨著吉非替尼使用劑量和處理時間的增加 , p-ATM和γH2AX表達也逐漸增加 , 同時啟動者半胱天冬酶9(initiatorcaspase9)和執行者caspase3均被切割 。
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